Jakiego koloru jest wysyp zarodników muchomora czerwonego i jak wygląda on pod mikroskopem? Wysyp jest biały. Zarodniki są gładkie, bezbarwne i szeroko owalne, mają około 10–13 na 8–9 mikrometrów i nie sinieją w jodzie. Każdy z tych faktów coś mówi. Ale muchomor zielonawy też daje biały wysyp, więc oto, który test co potwierdza, a któremu ufa się za bardzo.
Muchomor czerwony daje biały wysyp zarodników. Pod mikroskopem jego zarodniki są szeroko elipsoidalne, gładkie, bezbarwne i mają około 10–13 × 8–9 µm, a czterozarodnikowe podstawki mają u nasady sprzążki (Kuo, MushroomExpert). Zarodniki są nieamyloidalne: w odczynniku jodowym Melzera pozostają blade. Ten ostatni test jest tym przydatnym, bo zarodniki muchomora zielonawego są amyloidalne i ciemnieją do niebieskoczarnego. Sam biały wysyp wyklucza grzyby o brązowych i różowych zarodnikach, ale nie śmiertelnie trujące muchomory.
Nic z tego nie zastępuje oznaczenia całego owocnika. Cechy terenowe opisujemy w artykule czym jest muchomor czerwony oraz w naszym poradniku grzybiarza dla początkujących.
Jak zrobić wysyp zarodników muchomora czerwonego?
Odetnij trzon dojrzałego kapelusza i połóż kapelusz blaszkami w dół na papierze. Użyj kartki w połowie białej, w połowie czarnej albo szklanej płytki, bo biały wysyp na białym papierze jest prawie niewidoczny. Przykryj miską, by chronić przed przeciągiem, i zostaw na kilka godzin lub na noc.
Kilka szczegółów decyduje o tym, czy dostaniesz wysyp, czy smugę:
- Wybierz dojrzały kapelusz. Blaszki powinny być całkowicie odsłonięte. Owocniki w stadium jajka rzadko zrzucają zarodniki.
- Utrzymuj wilgoć. Kropla wody na kapeluszu pomaga w suchych pomieszczeniach.
- Nie używaj suszonych kapeluszy. Suszony materiał nie uwalnia zarodników w sposób pewny, więc wysyp z torebki ze sklepu nic nie mówi.
- Opisuj wszystko. Zarodniki się rozprzestrzeniają. Trzymaj każdy wysyp przy jego owocniku i umyj ręce.
Szkło jest wygodne, jeśli planujesz obejrzeć zarodniki pod mikroskopem. Odrobinę możesz zeskrobać prosto na szkiełko podstawowe.
Co wyklucza biały wysyp zarodników?
Wyklucza wiele grzybów, ale nie te najważniejsze. Biały wysyp wyklucza wszystko o brązowych, rdzawych, różowych, fioletowych lub czarnych zarodnikach. Odpadają więc zasłonaki, pieczarki, dzwonkówki i czernidłaki, a także wiele innych.
Nie wyklucza natomiast reszty rodzaju. Muchomor zielonawy, muchomory jadowite, muchomor plamisty i Muchomor królewski dają biały wysyp. Tak samo czubajka kania, grzyb jadalny, który ludzie mylili z brązowymi muchomorami. Biały wysyp mówi „może muchomor”. Nigdy nie mówi „bezpieczny muchomor”.
To najczęstsze nieporozumienie dotyczące wysypów zarodników. Są narzędziem sortującym, dobrym do mówienia, czym coś nie jest. Słabo mówią, czym coś jest.
Jak muchomor czerwony wygląda pod mikroskopem?
Zarodniki są szeroko elipsoidalne, gładkie i bezbarwne w wodorotlenku potasu, około 10–13 na 8–9 µm. Podstawki, czyli komórki wytwarzające zarodniki, mają po cztery zarodniki i sprzążki u nasady. Cystyd w hymenium nie stwierdzono (Kuo, MushroomExpert).
Dla porównania opublikowane opisy pokrewnych form podają podobne liczby. Żółty północnoamerykański var. guessowii ma zarodniki około 8,7–12,2 na 6,5–8,2 µm. Brzoskwiniowy var. persicina ma około 9,4–12,7 na 6,5–8,5 µm.
| Cecha | Muchomor czerwony | Co mówi |
|---|---|---|
| Wysyp zarodników | Biały | Wyklucza rodzaje o barwnych zarodnikach; nie śmiertelne muchomory |
| Kształt zarodników | Szeroko elipsoidalny, gładki | Zgodny z sekcją; nie unikalny |
| Wielkość zarodników | Ok. 10–13 × 8–9 µm | Pokrywa się z jego odmianami i krewniakami |
| Reakcja Melzera | Nieamyloidalna (bez zmiany barwy) | Odróżnia go od grupy muchomora zielonawego |
| Podstawki | Czterozarodnikowe, ze sprzążkami | Przydatne dla specjalistów; same rzadko rozstrzygają |
Czy te liczby oznaczają gatunek? Same nie. Pasują do muchomora czerwonego i kilku bliskich krewnych. Mikroskopia zawęża pole, a cały owocnik robi resztę.
Dlaczego odczynnik Melzera ma takie znaczenie?
Bo dzieli rodzaj wzdłuż linii istotnej dla bezpieczeństwa. Odczynnik Melzera to roztwór jodu. Zarodniki, które ciemnieją w nim do niebieskoczarnego, nazywa się amyloidalnymi. Te, które pozostają blade lub lekko żółkną, są nieamyloidalne.
Muchomor czerwony i jego sekcja, do której należą też muchomor plamisty i Muchomor królewski, mają zarodniki nieamyloidalne. Muchomor zielonawy i muchomory jadowite należą do innej części rodzaju, a ich zarodniki są amyloidalne. Jedna kropla odczynnika na wysypie może więc oddzielić grupę muchomora czerwonego od grupy odpowiedzialnej za większość śmiertelnych zatruć grzybami.
Uwaga dotycząca samego odczynnika. Odczynnik Melzera zawiera wodzian chloralu, który w niektórych krajach podlega ograniczeniom, więc amatorzy często nie mogą go łatwo kupić. A test jodowy jest tylko tak dobry jak badane zarodniki. Jeśli wysyp pochodzi z niewłaściwego grzyba, wynik nic nie znaczy.
Czego potrzebujesz, by samemu obejrzeć zarodniki?
Mniej, niż myślisz, ale więcej niż lupy. Zarodniki grzybów mają około 10 mikrometrów długości, więc potrzebny jest mikroskop świetlny z powiększeniem 400 razy, a najlepiej 1000 razy z immersją olejową. Tania lupa pokaże blaszki i łatki, nie zarodniki.
Podstawowy zestaw wygląda tak:
- Mikroskop świetlny z obiektywem 40× i obiektywem immersyjnym 100×, jeśli chcesz wiarygodnych pomiarów.
- Mikrometr okularowy, skalibrowany na mikrometrze przedmiotowym. Bez kalibracji wymiary to zgadywanie.
- Płyny do preparatów. Na pierwszy rzut oka wystarczy woda. Rozcieńczony wodorotlenek potasu ożywia suszone tkanki. Odczynnik Melzera jest potrzebny do testu amyloidalności.
- Szkiełka podstawowe, nakrywkowe i cienka igła do rozdzielania tkanki blaszek.
Zmierz co najmniej 20 zarodników z jednego wysypu i podaj zakres, nie pojedynczą wartość. Zarodniki różnią się w obrębie jednego wysypu, a pojedynczy pomiar może wypaść w dowolnym miejscu tego zakresu. Dlatego opublikowane opisy podają zakresy z wartościami skrajnymi w nawiasach.
Poza zarodnikami wprawne oko może zbadać tkankę blaszek i łatki. Blaszki muchomorów mają w przekroju charakterystyczną rozbieżną budowę, a łatki są resztkami osłony całkowitej, która kiedyś okrywała cały młody owocnik. Te cechy pomagają potwierdzić rodzaj. Nie odróżniają muchomora czerwonego od jego bliskich krewnych.
Czy mikroskopia odróżni muchomora czerwonego od jego odmian?
Nie w sposób pewny. Wielkości zarodników form czerwonej, żółtej i brzoskwiniowej pokrywają się niemal całkowicie. Badania DNA idą dalej i pokazują, że to, co nazywamy muchomorem czerwonym, składa się z kilku podobnie wyglądających linii.
Japońskie badanie z 2004 roku podzieliło muchomora czerwonego na co najmniej trzy grupy: euroazjatycką, euroazjatycką subalpejską i północnoamerykańską (Oda 2004). Zespół Gemla znalazł potem wszystkie trzy rosnące obok siebie na Alasce. Uznał je za gatunki kryptyczne, a nie tylko populacje regionalne, i wyśledził ich pochodzenie do regionu Syberii i Beringii (Geml 2006). Późniejsze badanie wykazało silną strukturę regionalną tych grup na różnych kontynentach (Geml 2008).
I tu zwrot akcji. Zespół Gemla odkrył też, że każda linia dzieli odmiany barwne kapelusza z pozostałymi. Żółty kapelusz nie wyznacza jednego gatunku, a czerwony innego. Nasz artykuł o gatunku czy odmianie śledzi to samo pytanie w przypadku Muchomora królewskiego.
Co to oznacza, jeśli kupujesz suszone kapelusze?
Nie zrobisz z nich wysypu zarodników, a mikroskopia suszonych kapeluszy wymaga umiejętności. Zarodniki czasem da się uzyskać z suszonych blaszek umieszczonych w wodorotlenku potasu, ale to praca dla specjalisty. Dla większości kupujących praktyczne kontrole to proces sortowania u sprzedawcy i to, co mogą zobaczyć sami.
Nasz artykuł o pochodzeniu i zbiorach opisuje, jak nasze kapelusze są ręcznie sortowane i sprawdzane do gatunku przed suszeniem. Poradnik kontroli jakości wymienia, co możesz sprawdzić sam. A jeśli porównujesz klasy jakości, kapelusze Grade A są na tyle całe, że cechy kapelusza i blaszek widać wyraźnie.
Ciekawi cię cykl życiowy stojący za tymi wszystkimi zarodnikami? Nasz artykuł o cyklu życiowym i ekosystemie wyjaśnia, jak muchomor czerwony się rozprzestrzenia i współpracuje z drzewami.
Najczęściej zadawane pytania
Jakiego koloru jest wysyp zarodników muchomora czerwonego?
Biały. Najlepiej widać go na czarnym papierze lub szkle. Biały wysyp wyklucza grzyby o brązowych, różowych i czarnych zarodnikach, ale muchomor zielonawy i inne muchomory też dają biały wysyp, więc sam w sobie nie potwierdza gatunku.
Jak duże są zarodniki muchomora czerwonego?
U formy czerwonej około 10–13 na 8–9 mikrometrów według opisu MushroomExpert. Są szeroko elipsoidalne, gładkie i bezbarwne. Formy pokrewne się pokrywają: żółty var. guessowii ma około 8,7–12,2 na 6,5–8,2 µm.
Czy zarodniki muchomora czerwonego są amyloidalne?
Nie, są nieamyloidalne. W odczynniku jodowym Melzera nie ciemnieją do niebieskoczarnego. To ważne, bo muchomor zielonawy i muchomory jadowite mają zarodniki amyloidalne, więc test jodowy może oddzielić grupę muchomora czerwonego od najgroźniejszej części rodzaju.
Czy z suszonego muchomora czerwonego można zrobić wysyp zarodników?
Nie w sposób pewny. Suszone kapelusze nie uwalniają zarodników tak jak świeże, dojrzałe. Zarodniki czasem można znaleźć pod mikroskopem w namoczonej tkance blaszek, ale to praca dla specjalisty i nie zastępuje zbadania całego świeżego owocnika.
Czy mikroskop odróżni muchomora czerwonego od żółtego?
Nie. Wielkości zarodników pokrywają się niemal całkowicie. Badania DNA pokazują, że muchomor czerwony obejmuje co najmniej trzy linie, a każda ma kilka barw kapelusza, więc ani barwa, ani zarodniki nie rozdzielają ich w sposób pewny.
Powiązane artykuły
- Czym jest muchomor czerwony
- Gdzie znaleźć muchomora czerwonego
- Muchomor królewski: gatunek czy odmiana?
- Cykl życiowy muchomorów i ich rola w ekosystemie
- Jak sprawdzić jakość muchomora czerwonego
Źródła
- Kuo M. Amanita muscaria var. muscaria. MushroomExpert.com. mushroomexpert.com
- Oda T, Tanaka C, Tsuda M. Molecular phylogeny and biogeography of the widely distributed Amanita species, A. muscaria and A. pantherina. Mycol Res. 2004;108(Pt 8):885-896. PubMed 15449593
- Geml J, Laursen GA, O'Neill K, Nusbaum HC, Taylor DL. Beringian origins and cryptic speciation events in the fly agaric (Amanita muscaria). Mol Ecol. 2006;15(1):225-239. PubMed 16367842
- Geml J, Tulloss RE, Laursen GA, Sazanova NA, Taylor DL. Evidence for strong inter- and intracontinental phylogeographic structure in Amanita muscaria, a wind-dispersed ectomycorrhizal basidiomycete. Mol Phylogenet Evol. 2008;48(2):694-701. PubMed 18547823

